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當(dāng)前位置:首頁(yè)技術(shù)文章PCR 產(chǎn)物純化方法

PCR 產(chǎn)物純化方法

更新時(shí)間:2025-09-12點(diǎn)擊次數(shù):379
PCR 產(chǎn)物純化方法(酚/氯仿):
1. 取 PCR 產(chǎn)物(此次為 200 ul),加入 50 ul 酚,加入 50 ul 氯仿/異戊醇(分相上層應(yīng)該是澄清的,如果不是澄
清,可以再次離心 5 min,將澄清上清取出);
2. 劇烈振蕩(100 bp 的小片斷沒(méi)有必要?jiǎng)×艺袷帲?,混勻后,離心 6000-8000 轉(zhuǎn)(一般大片斷離心 10000 rpm),
5 min。(只能離心 5 min,過(guò)久的話(huà)就會(huì)酚變成沉淀);
3. 取上請(qǐng),不要吸到中間箱,吸取后再在棄液中加入雙蒸水,再次離心,收集上清,反復(fù)兩次;
4. 上請(qǐng) 2 倍體積的 100%乙醇以及 0.2 倍體積的 NaAc 沉淀,-20oC(1 h 也可以)過(guò)夜沉淀(異丙醇效果更好,
但是不純);
5. 12000 轉(zhuǎn),離心 20min,棄去上請(qǐng)。70%乙醇清洗一次,離心,12000 rpm,10 min,重復(fù)洗滌 1-2 次(多
洗幾次除去酚雜質(zhì));
6. 棄去乙醇,充分晾干,雙蒸水融解。
2.13. 大腸桿菌菌落 PCR
1.取適量 PCR 薄壁管,置于冰上,每管先加入 17.3ul 的滅菌水。
2.用滅過(guò)菌的 10ul 小槍頭挑取單克隆白斑至滅菌水中,振蕩混勻。
3.依次加入:
10xBuffer 2.5
MgCl2(25mM) 1.8
DNTP(2.5mM) 1
T3 引物(10pmol) 1
T7 引物(10pmol) 1 33
Taq 酶 0.4

Total 25ul

“天根DNA產(chǎn)物純化試劑盒 DP205-02

各試劑均加好后,離心機(jī)上甩一下,使之沉底,置于 PCR 儀上
4. 94℃ 2 min
94℃ 4 min
94℃ 40 s
53.6℃ 40 s,35 個(gè)循環(huán)
72℃ 4 min
72℃ 10 min
4℃ 24 h
5.待 PCR 反應(yīng)進(jìn)入 4℃后,取下 PCR 薄壁管,取 7ulPCR 產(chǎn)物加入 3ul 溴芬蘭跑電泳,同時(shí)上 1Kb DNA ladder。
半小時(shí)后照相,觀(guān)察膠圖,根據(jù)膠圖粗略鑒定插入片段的大小及小片段率。
6.將快速鑒定和菌落 PCR 檢測(cè)合格的文庫(kù)送檢。不必要額外煮沸。只需要挑取少許克隆,在配好的 PCR 反應(yīng)
液中涮幾下,然后用正常的 PCR 反應(yīng)程序即可。因?yàn)樵?PCR 第一個(gè)循環(huán) 94°變性的步驟中(正常設(shè)置為 4-5min 即
可),質(zhì)?;蚧蚪M肯定有釋放,也足夠 PCR 反應(yīng)的模板用量了,這個(gè)我每天都在做,還沒(méi)有做不出的時(shí)候。
只需要挑取少許克隆,在配好的 PCR 反應(yīng)液中涮幾下,然后用正常的 PCR 反應(yīng)程序即可。因?yàn)樵?PCR 第一個(gè)

循環(huán) 94°C 變性的步驟中(正常設(shè)置為 4-5min 即可),質(zhì)?;蚧蚪M肯定有釋放,也足夠 PCR 反應(yīng)的模板用量了,

朗基PCR

這個(gè)我每天都在做,還沒(méi)有做不出的時(shí)候。
補(bǔ)充幾點(diǎn)如下:
1. 沾有菌落的牙簽在 PCR 反應(yīng)液中涮過(guò)之后,還可以直接扔到 LB 培養(yǎng)基中用來(lái)接種(問(wèn)題不大,重組質(zhì)粒一般都
含抗性的)。
2. 在做菌落 PCR 的時(shí)候,每次都要做陰性、陽(yáng)性對(duì)照,陽(yáng)性對(duì)照可以用抽提好的質(zhì)粒或基因組,這樣可以確定 PCR
主反應(yīng)液的配制沒(méi)有問(wèn)題,不會(huì)因?yàn)榫?PCR 陰性而懷疑 PCR 的反應(yīng);陰性對(duì)照加一點(diǎn)水或者什么都不加,這樣可
以幫助識(shí)別 PCR 反應(yīng)是否有假陽(yáng)性產(chǎn)生的可能;如果偷懶的話(huà),陰性對(duì)照可以不做,但陽(yáng)性對(duì)照則是必須要做的。
3. 再告訴大家一個(gè)偷懶的菌落 PCR 鑒定的方法:按照每次反應(yīng) 15-20 ul 的體系計(jì)算好 PCR 各反應(yīng)組分的量/次,
然后一次性配制 100 次或 50 次反應(yīng)的量,做成 Ready-to-use 的 PCR 主反應(yīng)液(除 Primers、Taq 酶不加,模板
用的是菌落),每次做菌落 PCR 的時(shí)候,只需要根據(jù)反應(yīng)的個(gè)數(shù),吸取相應(yīng)的 PCR 主反應(yīng)液,補(bǔ)加相應(yīng)的 Primers、
Taq 酶,再分裝即可。這樣的好處有二:即開(kāi)即用,節(jié)省時(shí)間;另外反應(yīng)組分均一,可減少實(shí)驗(yàn)批次之間的誤差。
用槍頭挑取半個(gè)菌落,加入 MIX(除了模板其他的都有),平板放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。等 PCR 結(jié)果出來(lái)了,直接

挑取陽(yáng)性克隆搖菌。

PCR MIX

  還可以采用菌落裂解電泳的方法直接挑取重組子。一般目的片段如果不是很小,空載體和重組載體比較容易區(qū)分的
話(huà),都可以采用這種方法。 將菌落培養(yǎng)時(shí)間稍微延長(zhǎng),挑取半個(gè)菌落加入裂解液中,同時(shí)挑取藍(lán)斑(如非蘭白斑,
直接取空載體質(zhì)粒)作為對(duì)照,電泳即可區(qū)分。 這個(gè)方法有現(xiàn)成的試劑盒,也可以自己配制。
  菌落 PCR:我的做法是用槍頭挑菌落,在分裝好的 pcr 反應(yīng)體系(除了 Taq 酶)中吸幾下,然后在 100 度 5 分鐘裂
解后加入 Taq 酶,然后就可以進(jìn)行 pcr 循環(huán)了。
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